2025-12-17
Ten eksperyment odnosi się do "GB 31658.22-2022 National Food Safety Standard — Determination of β-Agonist Residues in Animal-Derived Foods by Liquid Chromatography-Tandem Mass Spectrometry" and utilizes the Wayeal LCMS-TQ9200 liquid chromatography-tandem mass spectrometry system to determine the content of β-agonists in porkWyniki eksperymentalne wskazują, że badanie przydatności systemu wykazało dobrze ukształtowane szczyty i dobrą liniowość, spełniające wymagania eksperymentalne.Powtarzalność czasu retencji dla standardowego działającego roztworu beta- agonista była mniejsza niż 1%.W przypadku roztworu testowego wrażliwości agonistów β stosunek sygnału do hałasu głównych szczytów w stężeniach 0.2 ng/ ml i 0,5 ng/ ml były znacznie większe niż odpowiednio 3 i 10, spełniając wymagania eksperymentalne.
W badaniu próbki wieprzowiny nie wykryto agonistów β. Wszystkie powyższe dane spełniają wymagania dotyczące przyrządów określone w standardowej metodzie.
Kluczowe słowa:Płynna chromatografia-spektrometria masowa tandem; agonisty β; klenbuterol; bezpieczeństwo żywności.
1Instrumenty i odczynniki
1.1 Wykaz konfiguracji LCMS
Tabela 1 Wykaz konfiguracji przyrządów
| Nie, nie, nie. | Modułowe | Kty |
| 1 | LCMS-TQ9200 | 1 |
| 2 | P3600B Pompy dwustronne wysokiego ciśnienia stałego | 1 |
| 3 | CT3600 Piekarnik kolumnistyczny | 1 |
| 4 | AS3600 Autosampler | 1 |
| 5 | SmartLab CDS 2.0 Chromatografia Stacja robocza | 1 |
1.2 Odczynniki i normy
Tabela 2 Wykaz czynników i standardów
| Nie, nie, nie. | Reagens/standart | Czystość |
| 1 | Metanol | Klasa LC-MS |
| 2 | Etanol | Klasa LC-MS |
| 3 | Kwas mrówkowy | Klasa LC-MS |
| 4 | Octan amonu | Stopień analityczny |
| 5 | β-glukuronidaza/arylsulfataza | 30 U/60 U/ml |
| 6 | Kwas chlorowy | 70% |
| 7 | Acetatu etylowego | Stopień analityczny |
| 8 | tert-butylometylowy eter | Stopień analityczny |
| 9 | Roztwór amoniaku | Stopień analityczny |
| 10 | Clenbuterol Standardowy | 98% |
| 11 | Clenbuterol-D9 Standard | 98% |
| 12 | Ractopamina standardowa | 98% |
| 13 | Ractopamina-D6 Standardowa | 98% |
| 14 | Standardowy preparat cymaterol | 98% |
| 15 | Salbutamol standardowy | 98% |
| 16 | Salbutamol-D3 Standard | 98% |
| 17 | Terbutalina standardowa | 98% |
| 18 | Terbutalin-D9 Standard | 98% |
| 19 | Tulobuterol standardowy | 98% |
| 20 | Cimbuterol standardowy |
98% |
1.3 Materiał eksperymentalny i sprzęt pomocniczy
Ultrasonic Cleaner
Mieszalnik wiru
Wodny kąpiel stała temperatura Shaker
Centryfuga dużych prędkości
2Metoda eksperymentalna
2.1 Wykonanie wstępnej obróbki próby
2.1.1 Hydroliza i ekstrakcja enzymatyczna
Zważyć 2 g próbki (z dokładnością ± 0,05 g) do rurki odśrodkowej o pojemności 50 ml. Dodać 6 ml roztworu buforowego 0,2 mol/l octanu amonu i 40 μl β-glukuronidazy/arylosulfatazy.i inkubować w ciemności w temperaturze 37°C w kąpieli wodnej przez 16 godzin. Pozwól schłodzić do temperatury pokojowej do późniejszego użycia.
2.1.2 Ekstrakcja, oczyszczanie i koncentracja
Weź przygotowany roztwór, dodaj 100 μL wewnętrznego standardowego roztworu roboczego 100 ng/mL, wstrząśnij, aby dokładnie zmieszać, i odśrodkowuj w temperaturze 8000 r/min przez 8 minut. Zbierz nadmiernik, dodaj 5 mL 0.1 mol/l roztworu kwasu chlorowego, wir do zmieszania i ustawić pH do 1,0 ± 0,2 przy użyciu kwasu chlorowego. Po odśrodkowaniu w temperaturze 8000 r/min przez 8 minut, ustawić pH nadnastającego na 10 ± 0.5 przy użyciu roztworu wodorotlenku sodu 10 mol/l. Dodać 15 ml octanu etylu, wstrząsnąć średnią prędkością przez 5 minut, i odśrodkować w 5000 r/min przez 5 minut. Zbierać górną warstwę organiczną.dodaje się 10 ml eteru metylowego tert-butylu, wstrząsnąć średnią prędkością przez 5 minut, odcentryfikować w temperaturze 5000 r/min przez 5 minut, zbierać górną warstwę organiczną, połączyć wszystkie warstwy organiczne i odparować do wyschnięcia pod strumieniem azotu w temperaturze 50°C.Pozostałość rozpuszczamy w 5 ml 2% roztworu kwasu mrówkowego i odkładamy.Przygotować kolumnę ekstrakcyjną w fazie stałej wymiany kationowej w trybie mieszanym poprzez kolejne aktywowanie jej 3 ml metanolu i 3 ml kwasu mrówkowego 2%.następnie płukać 3 ml 2% kwasu mrówkowego i 3 ml metanolu, a następnie osuszyć pod próżnią. Eluować kolumnę 3 ml 5% roztworu metanolu amoniowanego. Wyparować eluat do wyschnięcia pod strumieniem azotu w temperaturze 50 °C. Ponownie rozpuścić pozostałość w 0,5 ml metanolu ¥0.1% roztwór kwasu mrówkowego (10:90, v/v), dokładnie zmieszać i filtrować przez mikroporową membranę o długości 0,22 μm do analizy za pomocą chromatografii ciekłej i spektrometrii masowej tandemowej.
2.2 Warunki eksperymentalne
2.2.1 Warunki chromatograficzne płynne
Kolumna chromatograficzna ∆ C18, 1,8 μm 2,1*100 mm
Faza ruchoma: A: 0,1% kwasu mrówkowego w wodzie; B: metanol
Przepływ: 0,3 ml/min
Temperatura kolumny: 40°C
Objętość wstrzyknięcia: 3 μl
3Badanie przydatności systemu
Badanie przydatności systemu wykazało, że szczyty docelowe są dobrze ukształtowane bez ingerencji innych szczytów zanieczyszczeń, spełniając wymagania eksperymentalne.
![]()
Rys. 1 Chromatogram badań siedmiu β-agonistów (1 ng/mL)
3.2 Zakres liniowy
Przyjmując roztwory standardowe beta-agonistów i stosując roztwory robocze o średnim stężeniu, przygotowano stopniowo krzywą standardową.z R2 > 0.99, co wskazuje na dobrą relację liniową.
Tabela 3 Tabela przedziałów liniowych dla β-agonistów
| Związek | Zakres liniowy | Równanie regresji | Wskaźnik korelacji liniowej (R2) |
| Clenbuterol | 00,5-50 ng/mL | y=0,121x-0.1024 | 0.9973 |
| Ractopamina | 00,5-50 ng/mL | y=0,7188x-0.3324 | 0.9982 |
| Cimerol | 00,5-50 ng/mL | Y=0.2186x-0.1270 | 0.9960 |
| Salbutamol | 00,5-50 ng/mL | y=0,0913x-0.0644 | 0.9973 |
| Terbutalina | 00,5-50 ng/mL | y=0,2788x-0.1353 | 0.9972 |
| Tulobuterol | 00,5-50 ng/mL | y=0,2699x-0.1041 | 0.9988 |
| Cimbuterol | 00,5-50 ng/mL | y=0,1025x-0.0255 | 0.9990 |
![]()
![]()
![]()
Rys. 2 Chromatogram Standard Curve siedmiu β-agonistów
3.3 Limit wykrywania (LOD) i limit ilościowy (LOQ)
W tej metodzie limit wykrywalności (LOD) i limit ilościowy (LOQ) dla β-agonistów ustala się odpowiednio na 0,2 ng/mL i 0,5 ng/mL.stosunek sygnału do hałasu przy określonych stężeniach dla LOD i LOQ jest większy niż 3 i 10, odpowiednio spełniające wymagania dotyczące wrażliwości eksperymentalnej.
Tabela 4 Odpowiednie stosunki sygnału do hałasu dla LOD i LOQ każdego związku
| Związek | Wskaźnik sygnału do hałasu (S/N) | |
| LOD | LOQ | |
| Clenbuterol | 19.65 | 67.23 |
| Ractopamina | 61.88 | 114.61 |
| Cimerol | 16.34 | 61.02 |
| Salbutamol | 34.22 | 90.29 |
| Terbutalina | 44.58 | 110.99 |
| Tulobuterol | 20.07 | 68.48 |
| Cimbuterol | 4.80 | 14.67 |
![]()
Rys. 3 Chromatogramy jonowe siedmiu β-agonistów w stężeniach LOD i LOQ
3.4 Badanie precyzji
W celu porównania czasu retencji i odchylenia obszaru szczytowego zastosowano mieszaninę substancji standardowych β- agonistów w niskim, średnim i wysokim stężeniu i wstrzykiwało się ją sześć razy z rzędu.Wyniki przedstawiono w poniższej tabeliWszystkie agonisty β wykazywały odchylenia czasu retencji mniejsze niż 1% i odchylenia obszaru szczytowego mniejsze niż 3%, co spełniało wymagania eksperymentalne.
Tabela 5 Badanie precyzyjności dla każdego związku
|
Związek |
Stężenie (ng/mL) |
Czas przechowywania RSD (%, n=6) |
Szczyt powierzchni RSD (%, n=6) |
|---|---|---|---|
| Clenbuterol | 1 | 0.16 | 2.40 |
| 5 | 0.13 | 1.78 | |
| 20 | 0.00 | 2.32 | |
| Ractopamina | 1 | 0.21 | 2.14 |
| 5 | 0.15 | 2.72 | |
| 20 | 0.21 | 1.69 | |
| Cimerol | 1 | 0.20 | 1.92 |
| 5 | 0.11 | 2.55 | |
| 20 | 0.14 | 2.41 | |
| Salbutamol | 1 | 0.17 | 1.37 |
| 5 | 0.23 | 1.66 | |
| 20 | 0.35 | 2.44 | |
| Terbutalina | 1 | 0.36 | 2.52 |
| 5 | 0.23 | 2.64 | |
| 20 | 0.36 | 1.36 | |
| Tulobuterol | 1 | 0.13 | 1.19 |
| 5 | 0.10 | 1.69 | |
| 20 | 0.10 | 1.70 | |
| Cimbuterol | 1 | 0.35 | 1.28 |
| 5 | 0.39 | 2.62 | |
| 20 | 0.38 | 1.65 |
![]()
Rys. 4 Dokładne badanie chromatogramów siedmiu β-agonistów (6 wstrzyknięć)
3.5 Badanie próbki
Próbki mięsa wieprzowego zakupione na rynku zostały poddane badaniom zgodnie z wspomnianą metodą wstępnej obróbki i nie wykryto agonistów β.Nie zaobserwowano szczytów chromatograficznych w czasie retencji odpowiadającym siedmiu agonistom β., podczas gdy pozostałe szczyty reprezentują sygnały macierzy po hydrolizie enzymatycznej.
![]()
Rys. 5 Chromatogram badawczy próbki wieprzowiny
4Wniosek
Metoda ta wykorzystuje układ spektrometrii masowej ciekłej chromatografii-tandem Wayeal LCMS-TQ9200 do określania β-agonistów w wieprzowinie.Dane pokazują, że wszystkie szczyty chromatograficzne wykazują dobry kształt bez odchylenia, wrażliwość spełnia wymagania eksperymentalne, współczynniki korelacji liniowej przekraczają 0.99, a dokładność jest zadowalająca przy odchyleniach czasu retencji poniżej 1% i odchyleniach powierzchni szczytowej w zakresie do 3% dla sześciu kolejnych wstrzyknięć każdego związku.W badaniach próbki wieprzowiny nie wykryto agonistów βWyniki te wskazują, że metoda, wyposażona w system Wayeal LC-MS/MS, spełnia rutynowe wymagania dotyczące wykrywania jakościowego i ilościowego analitycznych celów.
Wyślij do nas zapytanie