2026-04-07
Glicofosat, glufosynat, etefon i cztery inne pestycydy wraz z ich metabolitami są szeroko stosowane w uprawie roślin ze względu na ich wysoką skuteczność i szerokie spektrum działania chwastobójczego i dojrzewającego, co czyni je ważnymi środkami rolniczymi zapewniającymi plony i zwiększającymi efektywność rolnictwa.
Chiny ustanowiły maksymalne dopuszczalne poziomy pozostałości (MRL) dla glifosatu i innych pestycydów w żywności pochodzenia roślinnego. Dlatego opracowanie czułej, dokładnej i wydajnej metody wykrywania ma wielkie znaczenie praktyczne dla zapewnienia jakości i bezpieczeństwa produktów rolnych, regulacji praktyk produkcji rolnej i ochrony zdrowia konsumentów.
Obecnie metody wykrywania glifosatu i trzech innych pestycydów wraz z ich metabolitami w żywności pochodzenia roślinnego obejmują głównie chromatografię cieczową wysokosprawną (HPLC), chromatografię gazową (GC) i chromatografię jonową (IC).
Wśród tych metod HPLC jest podatna na adsorpcję matrycową; GC wymaga pochodnych analitycznych polarnych, takich jak glifosat; a IC cierpi na problemy, takie jak niska wydajność separacji i słaba zdolność przeciwdziałania zakłóceniom. Te ograniczenia ograniczają ich szerokie zastosowanie w wykrywaniu pozostałości w różnych rodzajach żywności pochodzenia roślinnego, w tym w zbożach, warzywach i herbacie.
GB 23200.122-2026 ustanawia metodę wykrywania pozostałości glifosatu, trzech innych pestycydów i ich metabolitów opartą na LC-MS/MS. Poprzez optymalizację warunków wstępnego przygotowania próbki, parametrów separacji chromatograficznej i trybów detekcji spektrometrii mas, metoda ta ma na celu rozwiązanie problemów powszechnie występujących w tradycyjnych metodach, takich jak wysokie zakłócenia, niska czułość, złożona obsługa i słaba adaptacja do matrycy. Umożliwia szybkie i dokładne oznaczanie pozostałości glifosatu i czterech pestycydów oraz ich metabolitów w żywności pochodzenia roślinnego, zapewniając tym samym wiarygodne wsparcie techniczne i standardowe odniesienia do kontroli jakości w przedsiębiorstwach produkcyjnych rolnych, rutynowych badań w instytucjach inspekcyjnych i badawczych oraz inspekcji nadzorczych przez organy regulacyjne.
Słowa kluczowe: Potrójny kwadrupolowy system LC-MS/MS, Jabłko, Glifosat.
1. Aparatura i odczynniki
1.1 Lista konfiguracji LCMS/MS
Tabela 1 Lista konfiguracji aparatury
|
Nr poz. |
Nazwa |
Ilość |
|---|---|---|
| 1 | System chromatografii cieczowej-spektrometrii mas z tandemem LCMS-TQ9200 | 1 |
| 2 | Pompa o stałym przepływie wysokociśnieniowa dwuskładnikowa P3600B | 1 |
| 3 | Komora kolumny CT3600 | 1 |
| 4 | Autosampler AS3600 | 1 |
| 5 | Stacja robocza systemu danych chromatograficznych SmartLab CDS 2.0 | 1 |
| 6 | Kolumna specjalistyczna do pozostałości pestycydów NovalC A4-P, 4 × 150 mm, 5μm | 1 |
1.2 Odczynniki i standardy
Tabela 2 Lista odczynników i standardów
|
Nr poz. |
Odczynniki i standardy referencyjne |
Specyfikacja |
|---|---|---|
| 1 | Roztwór amoniaku | Klasa LC-MS |
| 2 | Woda | Woda klasy 1 zgodnie z GB/T 6682 |
| 3 | Kwas mrówkowy | Klasa LC-MS |
| 4 | Wodorowęglan amonu | 100g |
| 5 | Roztwór standardowy glifosatu i czterech innych pestycydów oraz ich metabolitów | 100mg/L |
1.3 Materiał eksperymentalny i sprzęt pomocniczy
Mieszadło vortex
Waga analityczna z dokładnością do setnej części tysięcznej
Wirówka
Kolumna do ekstrakcji fazy stałej NovaChrom NovaPre HLB, 200mg/6mL
2. Metoda eksperymentalna
2.1 Przygotowanie roztworów
2.1.1 Standardowe roztwory robocze glifosatu i czterech innych pestycydów oraz ich metabolitów: Dokładnie rozcieńczyć roztwór standardowy glifosatu i czterech innych pestycydów oraz ich metabolitów do 1mg/L, a następnie rozcieńczyć matrycą jabłkową wolną od zanieczyszczeń, aby przygotować serię stężeń krzywej roboczej 5μg/L, 10μg/L, 20μg/L, 50μg/L, 100μg/L, 200μg/L i 50μg/L.
2.2 Warunki eksperymentalne
2.2.1 Warunki HPLC
Kolumna: Kolumna specjalistyczna do pozostałości pestycydów NovaChrom NovaIC A4-P, 4*150mm, 5μm
Faza ruchoma: Faza A: Woda; Faza B: 200mmol/L wodorowęglanu amonu – 0,05% roztworu amoniaku
Szybkość przepływu: 0,6mL/min
Temperatura kolumny: 40°C
Objętość wstrzyknięcia: 10µL
2.2.2 Warunki spektrometrii mas
Tabela 3 Parametry źródła jonów spektrometru mas
|
Źródło jonów |
Parametry |
|---|---|
| Napięcie źródła jonów | ESI–4500 V |
| Szybkość przepływu gazu odsolowującego | 15000mL/min |
| Szybkość przepływu gazu nebulizującego | 1500mL/min |
| Szybkość przepływu gazu kurtynowego | 5000mL/min |
| Szybkość przepływu gazu zderzeniowego | 800µL/min |
| Temperatura gazu odsolowującego | 600 °C |
| Temperatura gazu kurtynowego | 150 °C |
3. Wynik eksperymentu
3.1 Chromatogramy standardów
Oznaczanie glifosatu i czterech innych pestycydów oraz ich metabolitów w matrycy jabłkowej zostało zakończone w ciągu 15 minut, z dobrymi kształtami pików, brakiem ogonowania pików i zadowalającymi odpowiedziami związków, spełniającymi wymagania analizy eksperymentalnej.
![]()
Rys. 1 Chromatogram glifosatu i czterech innych pestycydów oraz ich metabolitów w matrycy jabłkowej (200μg/L)
3.2 Zakres liniowy
Mieszany roztwór standardowy glifosatu i czterech innych pestycydów oraz ich metabolitów był seryjnie rozcieńczany matrycą jabłkową wolną od zanieczyszczeń w celu przygotowania serii stężeń do skonstruowania krzywej standardowej. Zakres liniowy dla większości związków wynosił 5–500μg/L. Odchylenie między wynikami kalibracji liniowej a znanymi stężeniami mieściło się w maksymalnym dopuszczalnym odchyleniu. Współczynniki korelacji liniowej dla wszystkich związków były większe niż 0,995, co wskazuje na dobrą liniowość.
![]()
Rys. 2 Krzywe kalibracyjne glifosatu, czterech innych pestycydów i ich metabolitów w matrycy jabłkowej
3.3 Granica oznaczalności (LOQ)
Stosunki sygnału do szumu dla wszystkich związków w tej metodzie przy LOQ 5 μg/L przekraczają 10, zgodnie ze standardowymi kryteriami czułości.
Tabela 4 Parametry spektrometrii mas dla związków
|
Związek |
Stężenie (μg/L) |
Stosunek sygnału do szumu (S/N) |
|---|---|---|
| Glifosat | 5 | 3403,983 |
| Kwas aminometylofosfonowy (AMPA) | 5 | 48,463 |
| N-Acetylo-AMPA | 5 | 16,853 |
| N-Acetylo-glifosat | 5 | 42,410 |
| N-Metylo-glifosat | 5 | 92,846 |
| Kwas fosforowy | 5 | 72,957 |
| Glufosynat | 5 | 21,334 |
| Kwas 3-(metylfosfinowylo)propionowy (MPP) | 5 | 15,896 |
| N-Acetylo-glufosynat | 5 | 66,680 |
| Etefon | 5 | 15,348 |
3.4 Test precyzji
Roztwór matrycy jabłkowej z dodanym glifosatem i czterema innymi pestycydami oraz ich metabolitami o stężeniu 10μg/L był wstrzykiwany sześciokrotnie w celu oceny precyzji. Wyniki przedstawiono w poniższej tabeli i spełniają wymaganie precyzji ≤10%.
Tabela 5 Precyzja związków
|
Związek |
Stężenie (μg/L) |
RSD (%) |
|---|---|---|
| Glifosat | 10 | 9,643 |
| Kwas aminometylofosfonowy (AMPA) | 10 | 8,167 |
| N-Acetylo-AMPA | 10 | 8,875 |
| N-Acetylo-glifosat | 10 | 8,877 |
| N-Metylo-glifosat | 10 | 9,344 |
| Kwas fosforowy | 10 | 8,401 |
| Glufosynat | 10 | 6,460 |
| Kwas 3-(metylfosfinowylo)propionowy (MPP) | 10 | 8,608 |
| N-Acetylo-glufosynat | 10 | 7,563 |
| Etefon | 10 |
8,913 |
![]()
Rys. 3 Chromatogramy glifosatu i czterech innych pestycydów oraz ich metabolitów w matrycy jabłkowej (10μg/L)
3.5 Test próbki jabłka
Próbki jabłek handlowych zostały poddane obróbce wstępnej zgodnie ze standardową procedurą i przeanalizowane. Jak pokazano na poniższym rysunku, nie wykryto żadnych docelowych związków.
![]()
Rys. 4 Chromatogramy glifosatu i czterech innych pestycydów oraz ich metabolitów w próbkach jabłek
4. Wnioski
W niniejszej metodzie zastosowano system chromatografii cieczowej-spektrometrii mas z tandemem Wayeal LCMS-TQ9200 do oznaczania pozostałości glifosatu i czterech innych pestycydów oraz ich metabolitów w jabłkach. Dane eksperymentalne pokazują, że metoda zapewnia dobre kształty pików chromatograficznych bez ogonowania, czułość spełniającą wymagania, współczynniki korelacji liniowej większe niż 0,995 dla wszystkich związków i precyzję w granicach 10%. Nie zaobserwowano przenoszenia systemowego dla próbek o wysokim stężeniu. Wyniki te wskazują, że metoda, wyposażona w system chromatografii cieczowej-spektrometrii mas z tandemem Wanyi Technology, spełnia rutynowe wymagania dotyczące jakościowego i ilościowego oznaczania docelowych analityków.
Wyślij do nas zapytanie