2026-02-04
Niniejsza nota aplikacyjna przedstawia oznaczanie wielu fosforanów w żywności zgodnie z metodą 2 z GB 5009.256-2025 przy użyciu systemu chromatografii jonowej Wayeala.
Nadmierne spożycie fosforanów może zaburzyć metabolizm wapnia i fosforu w organizmie, prowadząc do upośledzenia wchłaniania minerałów lub innych problemów zdrowotnych. Dokładne wykrywanie pomaga przedsiębiorstwom naukowo kontrolować użycie dodatków, równoważyć jakość i bezpieczeństwo żywności oraz zapewnia wsparcie danych w celu optymalizacji receptur.
Słowa kluczowe:Chromatografia jonowa, aniony, żywność.
1. Instrument i regenci
1.1 Lista konfiguracji chromatografu jonowego
Tabela 1 Lista konfiguracji przyrządu
|
NIE. |
Modułowy |
Ilość |
|
1 |
Chromatograf jonowy IC6200 z detektorem przewodności |
1 |
|
2 |
Autosampler AS3100 |
1 |
|
3 |
Stacja robocza do chromatografii SmartLab CDS 2.0 |
1 |
|
4 |
HS-9A-PP 4,0*250mm |
1 |
1.2 Odczynniki i standardy
Tabela 2 Lista odczynników i standardów
|
NIE. |
Odczynniki i standardy |
Czystość |
|
1 |
Jon fosforanowy w wodzie (1000mg/L) |
1000 mg/l |
1.3 Materiał eksperymentalny i sprzęt pomocniczy
Filtr hydrofilowy typu strzykawkowego w puszce (0,45 μm)
Wtryskiwacz (20ml)
2. Metoda eksperymentu
2.1 Wstępna obróbka próbki
Odważyć 1-2 g (z dokładnością do 0,001 g) próbki do 50 ml probówki kolorymetrycznej. Dodać 22,5 ml roztworu wodorotlenku sodu o stężeniu 100 mmol/l. Mieszać na worteksie przez 1 minutę, następnie ekstrahować ultradźwiękowo w temperaturze 80°C przez 30 minut, wstrząsając co 5 minut, aby zapewnić całkowite rozproszenie próbki. Po ochłodzeniu do temperatury pokojowej rozcieńczyć do 50ml ultraczystą wodą i dokładnie wymieszać. Przenieść cały roztwór do probówki wirówkowej o pojemności 50 ml i wirować przy 8000 obr./min przez 5 minut. Odmierzyć 5 ml supernatantu do kolejnej probówki kolorymetrycznej o pojemności 50 ml, dodać 1 ml 30% kwasu azotowego i wymieszać na worteksie. Umieścić probówkę w łaźni wodnej o temperaturze 90 °C± 5 °C i podgrzewać przez 60 minut. Po ogrzaniu wyjąć rurkę i ostudzić ją do temperatury pokojowej w łaźni z zimną wodą. Na koniec rozcieńczyć wodą do kreski i dobrze wymieszać.
Odpipetować 2 ml roztworu do 10 ml probówki wirówkowej, następnie rozcieńczyć do kreski ultraczystą wodą. Umieścić probówkę w chłodzonej wirówce i wirować w temperaturze 4 °C i 8 tys obr/min przez 5 minut. Zbierz supernatant i przepuść go przez filtr 0,45μm membrana filtracyjna. Następnie pobrać odpowiednią objętość filtratu do analizy instrumentalnej.
Uwaga: W oryginalnej metodzie standardowej dodaje się oddzielnie 45 ml roztworu wodorotlenku sodu o stężeniu 50 mmol/l. Na potrzeby tego testu, aby ułatwić regulację objętości ze względu na większą wzbogaconą ilość, roztwór ekstrakcyjny zmodyfikowano do 22,5 ml roztworu wodorotlenku sodu o stężeniu 100 mmol/l dodanego oddzielnie. Modyfikacja ta nie wpływa na ważność wyników eksperymentów.
2.2 Warunki eksperymentu
Tabela 3 Warunki badania anionów
|
Kolumna |
HS-9A-PP, 4,0 × 250 mm |
|
Eluent |
30 mmol/L KOH (izokratyczny) |
|
Natężenie przepływu |
1 ml/min |
|
Czas działania |
30 minut |
|
Objętość wtrysku |
100µl |
|
Temperatura kolumny |
30°C |
|
Temperatura ogniwa |
35°C |
|
Prąd tłumiący |
90 mA |
3. Wynik eksperymentu
3.1 Standardowa chromatografia
Oznaczanie wielu fosforanów w żywności zgodnie z metodą 2 z GB 5009.256-2025 zostało zakończone w ciągu 30 minut. Wyniki testu wykazały dobrą liniowość i powtarzalność liniową, doskonałe granice wykrywalności i oznaczalności, zadowalającą precyzję, dużą powtarzalność próbek, niezawodną równoległość próbek, stałą powtarzalność próbek wzbogaconych i doskonałe współczynniki odzysku. Wszystkie wskaźniki wydajności spełniają wymagania określone w GB 5009.256-2025 dotyczące oznaczania fosforanów wielorakich w żywności.
![]()
Nakładanie się chromatogramu krzywej standardowej
3.2 Zakres liniowy
Pobierz odpowiednią ilość roztworu wzorcowego i rozcieńcz go, aby przygotować krzywą kalibracyjną. Odchylenie między wynikami detekcji liniowej a znanymi stężeniami było mniejsze niż maksymalne dopuszczalne odchylenie, przy wartości R większej niż 0,999, co wskazuje na doskonałą liniowość dla każdego składnika.
Tabela 4 Tabela zakresu liniowego dla jonów fosforanowych
|
Jon analityczny |
Zakres liniowy |
Liniowy współczynnik korelacji (R) |
|
Jon fosforanowy |
0,05-20 mg/l |
0,99971 |
![]()
Wyniki liniowości dla jonów fosforanowych
3.3 Test powtarzalności liniowości
Chromatogramy testu powtarzalności dla punktu o niskiej wartości krzywej standardowej S1 z 7 kolejnymi wstrzyknięciami
![]()
Chromatogramy testu powtarzalności dla krzywej standardowej o średniej wartości S4 z 7 kolejnymi wstrzyknięciami
![]()
Chromatogramy testu powtarzalności dla punktu o wysokiej wartości krzywej standardowej S7 z 7 kolejnymi wstrzyknięciami
![]()
Dane z testu powtarzalności dla krzywej kalibracyjnej
|
Nazwa złożona |
Jon fosforanowy |
|
|
Standardowy punkt krzywej |
Czas retencji (min) RSD(%) |
Powierzchnia piku (μS*s) RSD(%) |
|
S1 |
0,482 |
0,687 |
|
S4 |
0,133 |
0,342 |
|
S7 |
0,492 |
0,755 |
3.4 Test LOD
Chromatogram testowy LOD
![]()
Dane testowe LOD
|
Mieszanina |
Stężenie (mg/l) |
SNR |
Wysokość piku (μS) |
Hałas (μS) |
Teoretyczny LOD (mg/L) |
Teoretyczny LOD (g/kg) |
Teoretyczny LOQ (mg/L) |
Teoretyczny LOQ (g/kg) |
|
Jon fosforanowy |
0,01 |
13.793 |
0,005 |
0,001 |
0,0022 |
0,003 |
0,0073 |
0,009 |
3.5 Próba precyzji
Nakładające się chromatogramy dwóch niezależnych testów
![]()
Precyzyjne dane testowe
|
Nazwa złożona |
Stężenie (mg/L) |
Średnia (mg/l) |
Absolutna różnica |
Procent (%) |
|
Jon fosforanowy |
3.403 |
3.402 |
0,002 |
0,06 |
|
3.401 |
3.6 Chromatogram testu ślepej próbki
Chromatogram testu pustej próbki
![]()
Puste przykładowe dane testowe
|
Nazwa złożona |
Stężenie (mg/L) |
Stosunek sygnału do szumu (S/N) |
Wysokość piku (μS) |
Hałas (μS) |
|
Jon fosforanowy |
0,013 |
15.330 |
0,013 |
0,002 |
3.7 Chromatogramy badania równoległości i powtarzalności próbek
Nałożone chromatogramy mrożonych krewetek, równoległa próbka 1 (8 nastrzyków)
![]()
Nakładające się chromatogramy mrożonych krewetek, równoległa próbka 2 (8 wstrzyknięć)
![]()
Dane z testu mrożonych krewetek
|
Nazwa próbki |
Stężenie (mg/l) |
Masa próbki (g) |
Objętość rozcieńczenia (ml) |
Współczynnik rozcieńczenia |
Wynik (g/kg) |
Średnia (g/kg) |
Różnica bezwzględna (%) |
Procent (%) |
RSD czasu retencji (min) (%) |
RSD obszaru piku (μS*s) (%) |
|
Próbka równoległa mrożonych krewetek 1 |
2.836 |
1,7365 |
50 |
50 |
4,064 |
4.057 |
0,015 |
0,37 |
0,097 |
0,934 |
|
Próbka równoległa mrożonych krewetek 2 |
2.622 |
1.6108 |
50 |
50 |
4.049 |
0,088 |
0,515 |
3.8 Próbka wybijania i test powtarzalności wybijania
Nakładający się chromatogram 50% wzbogaconych mrożonych krewetek (8 zastrzyków)
![]()
Dane z testu powtarzalności dla mrożonych krewetek o stężeniu 50%.
|
Mieszanina |
Jon fosforanowy |
|
|
Numer seryjny |
Czas retencji (min) |
Powierzchnia piku (μS*s) |
|
1 |
16.493 |
148.225 |
|
2 |
16.523 |
148.582 |
|
3 |
16.543 |
148,628 |
|
4 |
16.557 |
148.806 |
|
5 |
16.556 |
149.562 |
|
6 |
16.573 |
148,875 |
|
7 |
16.585 |
149.009 |
|
8 |
16.593 |
148,798 |
|
Mieć na myśli |
16.553 |
148.811 |
|
RSD (%) |
0,2 |
0,259 |
Nakładające się chromatogramy mrożonych krewetek ze 100% poziomem szczytowym (8 zastrzyków)
![]()
Dane z testu powtarzalności mrożonych krewetek ze 100% poziomem skoku
|
Nazwa złożona |
Jon fosforanowy |
|
|
Numer seryjny |
Czas retencji (min) |
Powierzchnia piku (μS·s) |
|
1 |
16.517 |
191.367 |
|
2 |
16.527 |
190,92 |
|
3 |
16.542 |
190,963 |
|
4 |
16.52 |
191.291 |
|
5 |
16.533 |
191.519 |
|
6 |
16.511 |
191.187 |
|
7 |
16.535 |
191,535 |
|
8 |
16.538 |
191.435 |
|
Mieć na myśli |
16.528 |
191.277 |
|
RSD (%) |
0,066 |
0,124 |
Nakładające się chromatogramy mrożonych krewetek o poziomie szczytowym 150% (8 zastrzyków)
![]()
Dane z testu odtwarzalności mrożonych krewetek przy poziomie skoku 150%.
|
Mieszanina |
Jon fosforanowy |
|
|
NIE. |
Czas retencji (min) |
Powierzchnia piku (μS*s) |
|
1 |
16.506 |
230.087 |
|
2 |
16.506 |
230,749 |
|
3 |
16.497 |
230.363 |
|
4 |
16.498 |
230.513 |
|
5 |
16.464 |
230.610 |
|
6 |
16.468 |
230.497 |
|
7 |
16.483 |
230.516 |
|
8 |
16.477 |
231.089 |
|
Przeciętny |
16.487 |
230.553 |
|
RSD (%) |
0,101 |
0,126 |
Dane testowe dotyczące wybijania mrożonych krewetek
|
Nazwa złożona |
Typ kolca |
Stężenie testowe (mg/L) |
Końcowa objętość (L) |
Współczynnik rozcieńczenia |
Masa próbki (g) |
Ilość skoku (µg) |
Wartość tła (μg) |
Skokowa regeneracja (%) |
|
Jon fosforanowy |
50% Skok |
4.187 |
0,05 |
50 |
1,6905 |
3600 |
6790 |
102.15 |
|
Jon fosforanowy |
Na 100% Spike |
5.382 |
0,05 |
50 |
1,5948 |
7200 |
6790 |
92,57 |
|
Jon fosforanowy |
150% Szpiku |
6.488 |
0,05 |
50 |
1,6250 |
10000 |
6790 |
94,30 |
Na podstawie dostarczonych danych piki chromatograficzne wykazują dobry kształt, a wszystkie współczynniki korelacji liniowej są większe niż 0,999. Oznaczenie fosforanów w żywności przeprowadzono przy użyciu kolumny chromatograficznej wodorowo-wodorotlenkowej firmy NovaChrom (HS-9A-PP, 4 × 250mm, 9μm), w odniesieniu do drugiej metody określonej w GB5009.256-2025 do oznaczania fosforanów wielorakich w żywności. Wyniki eksperymentów wykazują, że druga metoda charakteryzuje się doskonałą liniowością i powtarzalnością liniową. Pokazuje również wyjątkową granicę wykrywalności (0,003 g/kg), granicę oznaczalności (0,009 g/kg) i precyzję. Metoda wykazuje dobrą powtarzalność, równoległość próbek i doskonałe współczynniki odzyskiwania impulsów. Zarówno granica wykrywalności, jak i granica oznaczalności są znacznie poniżej standardowych wymagań wynoszących odpowiednio 0,05 g/kg i 0,1 g/kg. RSD obszarów pików dla powtarzalności próbki wahało się od 0,515% do 0,934%. Bezwzględna różnica pomiędzy dwoma niezależnymi oznaczeniami uzyskanymi w warunkach powtarzalności dla próbki wyniosła 0,37% średniej arytmetycznej. W badaniach precyzyjnych bezwzględna różnica między dwoma niezależnymi oznaczeniami uzyskanymi w warunkach powtarzalności wyniosła 0,06% średniej arytmetycznej, co nie przekracza standardowego wymagania wynoszącego 15%. Stopa odzysku wahała się od 92,57% do 102,15%. Metoda ta spełnia wymagania normy GB5009.256-2025 dotyczące oznaczania zawartości fosforanów wielorakich w żywności.
4. Wniosek
Analizę tę przeprowadzono przy użyciu chromatografu jonowego Wayeal w celu oznaczenia wielu fosforanów w żywności zgodnie z metodą 2 z GB5009.256-2025. Metoda umożliwia dokładne oznaczenie ilościowe zawartości fosforanów w żywności, weryfikując jej zgodność z normami krajowymi (m.in. GB 5009.256-2025). Pomaga to zapobiegać przekraczaniu przez przedsiębiorstwa dopuszczalnych limitów dodatków i wspiera integralność systemów regulacyjnych dotyczących bezpieczeństwa żywności.
Wyślij do nas zapytanie